超微量高纯度质粒快速提取试剂盒(质粒小提)
货号 | 次数 |
NP03012 | 100次 |
NP03013 | 200次 |
适用范围
适用于小量或微量质粒的快速提取。
试剂盒组成、储存、稳定性
试剂盒组成 |
保存 |
100 次(NP03012) |
200 次(NP03013) |
平衡液 |
室温 |
10 mL |
20 mL |
RNaseA(10mg/mL) |
-20℃ |
250µL |
500µL |
溶液 P1 |
4℃ |
25 mL |
50 mL |
溶液 P2 |
室温 |
25 mL |
50 mL |
溶液 P3 |
室温 |
35 mL |
70 mL |
漂洗液 WB |
室温 |
25 mL 第一次使用前加 100mL 无水乙醇 |
25 mL×2 第一次使用前加 100mL 无水乙醇 ×2 |
去蛋白液 PE |
室温 |
31.5 mL 第一次使用前加 18mL 无水乙醇 |
63 mL 第一次使用前加 36mL 无水乙醇 |
洗脱缓冲液 EB |
室温 |
15mL |
15mL |
吸附柱 NE/ 收集管(2mL) |
室温 |
100 个 |
200 个 |
存储事项
本试剂盒在室温储存 24 个月不影响使用效果。
第一次使用时,将试剂盒所带的全部 RNaseA 加入溶液 P1 后(终浓度 100μg/mL)置 于 2-8℃保存。如果溶液 P1 中 RNase A 失活,提取的质粒可能会有微量 RNA 残留,在溶液P1 中补加 RNase A 即可。
环境温度低时溶液 P2 中 SDS 可能会析出浑浊或者沉淀,可在 37℃水浴加热几分钟,即可恢复澄 清,不要剧烈摇晃,以免形成过量的泡沫。
避免试剂长时间暴露于空气中产生挥发、氧化、pH 值变化,各溶液使用后应及时盖紧盖子。
产品介绍
本试剂盒采用改进 SDS- 碱裂解法裂解细胞,离心吸附柱内的硅基质膜在高盐、低 pH 值状态下选择性地结合溶液中的质粒 DNA, 再通过去蛋白液和漂洗液将杂质和其它细菌成分去除, 最后低盐、 高 pH 值的洗脱缓冲液将纯净质粒 DNA 从硅基质膜上洗脱。
产品特点
离心吸附柱内硅基质膜全部采用特制吸附膜,柱与柱之间吸附量差异极小,可重复性好。
独有的去蛋白液配方,可以高效去除残留的核酸酶,即使是核酸酶含量丰富的菌株如 JM 系列、 HB101 也可以轻松去除。有效防止了质粒被核酸酶降解。
快速、方便,不需要使用有毒的苯酚、氯仿等试剂,也不需要乙醇沉淀。获得的质粒产量高、 纯度好, 可以直接用于酶切、转化、PCR、体外转录、测序等各种分子生物学实验。
注意事项
所有的离心步骤均在室温完成,使用转速可以达到 13,000rpm 的传统台式离心机。
提取质粒的量与细菌培养浓度、质粒拷贝数等因素有关。一般高拷贝质粒,建议接种单菌落于1.5-4.5 mL 加合适抗生素的 LB 培养基, 过夜培养 14-16 个小时,可提取出多达 20µg 的纯 净质粒。如果所提质粒为低拷贝质粒或大于 10kb 的大质粒,应适当加大菌体使用量,使用 5-10 mL 过夜培养物,同时按比例增加 P1、P2、P3 的用量,其它步骤相同。
得到的质粒 DNA 可用琼脂糖凝胶电泳和紫外分光光度计检测浓度与纯度。OD260 值为 1 相当于 50µg/ml DNA。电泳可能为单一条带,也可能为 2 条或者多条 DNA 条带,这主要是不同程度的 超螺旋构象质粒泳动位置不一造成, 与提取物培养时间长短、提取时操作剧烈程度等有关。本公司 产品正常操作情况下基本超螺旋可以超过 90%。
质粒 DNA 确切分子大小, 必须酶切线性化后, 对比 DNA 分子量 Marker 才可以知道。处于环状 或者超螺旋状态的的质粒,泳动位置不确定,无法通过电泳知道其确切大小。
洗脱液 EB 不含有螯合剂 EDTA,不影响下游酶切、连接等反应。也可以使用水洗脱,但应该确 保 pH 大于 7.5,pH 过低影响洗脱效率。用水洗脱质粒应该- 20℃保存。质粒 DNA 如果需要长 期保存,可以用 TE 缓冲液洗脱(10mM Tris-HCl,1mM EDTA,pH 8.0),但是 EDTA 可能 影响下游酶切反应,使用时可以适当稀释。
关于平衡液的使用
介绍: 核酸吸附硅胶膜柱子长期放置过程中会同空气中的电荷 / 尘埃发生反应而影响其核酸的结合能力。 硅胶柱经平衡液预处理后可大大减少柱子中硅胶膜的憎水基团,提高核酸的结合能力,从而提高硅胶柱 子回收效率。平衡液是强碱性溶液,若不小心碰到,请用大量自来水清洗。用完后需盖紧瓶盖,以免接 触空气。平衡液室温保存,在保存过程中如有沉淀生成,请加热至 37℃使沉淀完全消失。
使用方法 :取一个新的硅胶膜吸附柱子装在收集管中,吸取 100µL 的平衡液至柱子中。13,000rpm 离心 1 分钟,倒掉收集管中废液,将吸附柱子重新放回收集管。此时平衡液预处理柱子完毕。接后续的 操作步骤。
操作步骤(实验前请先阅读注意事项)
提示:
* 第一次使用前请先在漂洗液 WB 和去蛋白液 PE 瓶中加入指定量无水乙醇,充分混匀,加入后请及时在方框打钩标记已加入乙醇,以免多次加入 !
*将 RNase A 全部加入溶液 P1 中,混匀,每次使用后置于 2-8℃保存。
1. 吸附柱预处理:取一个新的硅胶膜吸附柱子装在收集管中,吸取 100µL 的平衡液至柱子中。 13,000 rpm 离心 1 分钟, 倒掉收集管中废液, 将吸附柱子重新放回收集管。此时平衡液预处理柱子完毕。
2. 取 1.5-4.5 mL 过夜培养的菌液,12,000 rpm 离心 30 秒,尽可能的倒干上清,收集菌体。
收集超过 1.5 mL 菌液, 可以离心弃上清后, 在同一个 1.5mL 管内加入更多的菌液, 重复步骤 1, 直到收集到足够的菌体。
3. 用 250µL 溶液 P1 重悬菌体沉淀,涡旋振荡至彻底悬浮。
如果有未彻底混匀的菌块,会影响裂解,导致提取量和纯度偏低。
4. 加 250µL 的溶液 P2,温和地上下翻转 6-8 次使菌体充分裂解,室温放置 4 分钟。
温和地混合,不要剧烈震荡,以免基因组 DNA 剪切断裂!所用时间不应超过 5 分钟!以免质粒 受到破坏。此时菌液应变得清亮粘稠,如果菌体少,很快清亮粘稠后就可以做下一步。
5. 加 350µL 溶液 P3, 立即温和地上下翻转 6-8 次, 充分混匀时会出现白色絮状沉淀。13,000rpm 离心 10 分钟,小心取上清。
加入溶液 P3 后应该立即混匀,以免产生 SDS 的局部沉淀。
6. 将上一步所得上清加入吸附柱 NE 中(吸附柱放入收集管中) , 12,000rpm 离心 30-60 秒, 倒掉收集管中的废液。
7. 可选步骤 : 加入 500µL 去蛋白液 PE,12,000rpm 离心 30 秒,弃废液。
此步骤为了去除痕量核酸酶等杂质,如所用菌株为 JM 系列、HB101 等 endA 菌株或野生型菌 株,核酸酶含量丰富, 应加此步骤;如所用菌株为 XL-1 Blue、Top10 和 DH5α 等缺陷型菌株, 核酸酶含量低,则可略过此步骤。
8. 加入 600µL 漂洗液 WB(请先检查是否已加入无水乙醇 !) ,12,000rpm 离心 30 秒, 弃掉废液。
9. 加入 600µL 漂洗液 WB,12,000rpm 离心 30 秒,弃掉废液。
10. 将吸附柱 NE 放回空收集管中, 13,000rpm 离心 2 分钟,尽量除去漂洗液, 以免漂洗液中残留乙
醇抑制下游反应。
11. 取出吸附柱 NE,放入一个干净的离心管中, 在吸附膜的中间部位加 50-100µL 洗脱缓冲液 EB(洗脱缓冲液事先在 65-70℃水浴中加热效果更好),室温放置 2 分钟,12,000rpm 离心 1 分钟。如果需要较多量质粒,可将得到的溶液重新加入离心吸附柱中,离心 1 分钟。
洗脱体积越大,洗脱效率越高。如果需要质粒浓度较高,可以适当减少洗脱体积, 但是最小 体积不应少于 30μL,体积过小降低质粒洗脱效率,减少质粒产量。
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