核小体76476

超微量琼脂糖凝胶纯化回收DNA试剂盒(胶回收)

超微量琼脂糖凝胶纯化回收DNA试剂盒(胶回收)
货号 次数
NP01012 100次
NP01013 200次

 

适用范围

适用于琼脂糖凝胶 DNA 回收和 PCR 产物清洁回收。

 

试剂盒组成、储存、稳定性

试剂盒组成

保存

100 次(NP01012)

200 次(NP01013)

平衡液

室温

10 mL

20 mL

溶胶液 DD

室温

50mL

100mL

漂洗液 WB

室温

25 mL

第一次使用前加入 100mL

无水乙醇

25 mL×2

第一次使用前加入 100mL

无水乙醇 ×2

洗脱缓冲液 EB

室温

15 mL

15 mL

吸附柱 NS/ 收集管(2 mL)

室温

100 个

200 个

 

本试剂盒在室温储存 24 个月不影响使用效果。

 

储存事项

所有的溶液应该是澄清的,如果环境温度低时溶液可能形成沉淀,此时不应该直接使用,可  37℃水浴加热几分钟,即可恢复澄清。使用前应该恢复到室温。

储存于低温(4℃或者 -20℃)会造成溶液沉淀,影响使用效果,因此运输和储存均在室温 下(15℃ -25℃)进行。

避免试剂长时间暴露于空气中产生挥发、氧化、pH 值变化, 各溶液使用后应及时盖紧盖子。

 

产品介绍

在高离序盐存在的情况下,DNA 片断选择性的吸附于离心柱内的硅基质膜上,再通过一系 列快速的漂洗-离心的步骤,漂洗液将引物、核苷酸、蛋白、酶等杂质去除,最后低盐、高 pH 值的洗脱缓冲液将纯净 DNA 从硅基质膜上洗脱。

 

产品特点

·离心吸附柱内硅基质膜全部采用特制吸附膜,柱与柱之间吸附量差异极小,可重复性好。 ·溶胶液不含碘化钠和高氯酸盐,不影响回收后酶切、连接克隆等下游反应。

·溶胶液加酚红调制成为了黄颜色, 便于观察溶胶效果和监测 pH 值变化从而达到最佳结合效果, 大大提高回收效率。

·改进的溶胶液配方 , 大大提高了缓冲能力和稳定性,即使样品变化很大也能将 pH 缓冲在最佳 结合范围内。

·快速、方便,不需要使用有毒的苯酚、氯仿等试剂,也不需要乙醇沉淀。

 

注意事项

    所有的离心步骤均在室温完成,建议使用转速可以达到 13,000rpm 的传统台式离心机。

    溶胶液中含有刺激性化合物, 操作时要戴乳胶手套, 避免沾染皮肤, 眼睛和衣服。若沾染皮肤、 眼睛时,要立即用大量清水或者生理盐水冲洗。

    回收纯化的 DNA 片段一般在 100bp 到 40kb 之间, 过长、过短片段的回收效率有所降低。

    回收 DNA 的量和起始 DNA 的量、洗脱体积、DNA 片断大小有关。 一般 1-15μg, 100bp-5kb 的 DNA 片段,回收率可高达 85%。

    切胶回收时,紫外灯观察对 DNA 片段有损坏作用,应该尽可能使用能量低的长波紫外线, 并且尽可能的缩短紫外线下处理的时间。

    洗脱液 EB 不含有螯合剂 EDTA,不影响下游酶切、连接等反应。也可以使用水洗脱,但应 该确保 pH 大于 7.5,pH 过低会影响洗脱效率。用水洗脱,DNA 片段应该保存在 -20℃。 DNA 片段如果需要长期保存, 可以用 TE 缓冲液洗脱(10mM Tris-HCl1mM EDTA  pH 8.0),但是 EDTA 可能影响下游酶切反应,使用时可以适当稀释。

 

关于平衡液使用

介绍: 核酸吸附硅胶膜柱子长期放置过程中会同空气中的电 / 尘埃发生反应而影响其核酸的结 合能力。硅胶柱经平衡液预处理后可大大减少柱子中硅胶膜的憎水基团,提高核酸的结合能力,从而提高硅胶柱子回收效率。平衡液是强碱性溶液,若不小心碰到,请用大量自来水清洗。用完   后需盖紧瓶盖,以免接触空气。平衡液室温保存,在保存过程中如有沉淀生成,请加热至 37℃使 沉淀完全消失。

使用方法:取一个新的硅胶膜吸附柱子装在收集管中,吸取 100μL 的平衡液至柱子中。13,000   rpm 离心 1 分钟, 倒掉收集管中废液,  将吸附柱子重新放回收集管。此时平衡液预处理柱子完毕。 接后续的操作步骤。

 

产品特点

提示: 第一次使用前请先在漂洗液 WB 中加入指定量无水乙醇,加入后请及时打钩标记已加 入乙醇,以免多次加入 !

1. 平衡液预处理吸附柱:  吸取 100μL 的平衡液至柱子中。13,000 rpm 离心 1 分钟,倒掉收集 管中废液,将吸附柱子重新放回收集管。

2. 在长波紫外灯下,用干净刀片将所需回收的 DNA 条带切下,尽量切除不含 DNA 的凝胶,得 到凝胶体积越小越好。

3. 将切下的含有 DNA 条带凝胶放入 1.5mL 离心管,无需称重,加 400μL 溶胶液 DDPCR 产物回收:当 PCR 反应液或酶切反应液体积不足 100μL 时,用水或 TE 缓冲液 洗脱(10mM Tris-HCl1mM EDTApH 8.0)补充至 100μL,加入 300μL 溶胶液 DD  分混匀,直接进入步骤 5)

4. 56℃水浴放置 10 分钟(或直至胶完全溶解)。每 2-3 分钟震荡一次加速溶解。

5. 将上一步所得溶液加入吸附柱 NS 中(吸附柱放入收集管中 室温放置 1 分钟,  12,000rpm 离心 30-60 秒,倒掉收集管中的废液。过滤下的溶胶液和收集管内残存的强碱性平衡液混合后,溶胶液可能会从黄色变成橘红甚至 紫色,此为酚红 pH 指示剂碱性条件下的正常颜色变化。

6. 加入 600μL 漂洗液 WB(请先检查是否已加入无水乙醇 !),12,000rpm 离心 30 秒,弃掉废液。

7. 加入 600μL 漂洗液 WB12,000rpm 离心 30 秒,弃掉废液。

8. 将吸附柱 NS 放回空收集管中,12,000rpm 离心 2 分钟,尽量除去漂洗液,以免漂洗液中残 留乙醇抑制下游反应。

9. 取出吸附柱 NS, 放入一个干净的离心管中,  在吸附膜的中间部位加 50μL 洗脱缓冲液 EB(洗 脱缓冲液事先在 65-70℃水浴中加热效果更好),室温放置 2 分钟,12,000rpm 离心 1 分钟。  如果需要较多量 DNA,可将得到的溶液重新加入吸附柱中,离心 1 分钟。

 

洗脱体积越大,洗脱效率越高,如果需要 DNA 浓度较高,可以适当减少洗脱体积,   但是最 小体积不应少于 25μL,体积过小降低 DNA 洗脱效率,减少产量。

 

 

说明书:

 

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