检测用病毒核酸(DNA/RNA)提取试剂盒
货号 | 次数 |
NP11011 | 50次 |
试剂盒组成、储存、稳定性
试剂盒组成 |
保存 |
50 次 NP11011 |
裂解液 VLB |
室温 |
25mL |
去蛋白液 RE |
室温 |
25mL |
漂洗液 RW |
室温 |
10 mL 第一次使用前按说明加指定量乙醇 |
RNase-free H2O |
室温 |
10 mL |
蛋白酶 K 溶液 |
4℃或者室温 |
1 mL |
RNase-free 吸附柱 RNANE 和收集管 |
室温 |
50 套 |
存储事项
本试剂盒在室温储存 12 个月不影响使用效果。
1. 蛋白酶 K 保存在即用型甘油缓冲液中, 常温运输, 收到后, 不超过 25℃室温至少 保存 6 个月, 4℃保存 12 个月,- 20℃保存 2 年。
2. 避免试剂长时间暴露于空气中产生挥发、氧化、PH 值变化,各溶液使用后应及时 盖紧盖子。
产品介绍
本试剂盒适用于动物组织、血浆、血清、淋巴液、培养上清、分泌物、拭子、粪 便、牛奶、尿液 等样品中病毒核酸的提取,可同时提取样本中的 DNA 和 RNA。离心 吸附柱中采用的硅基质材 料为本公司特有新型材料, 配合本公司独特的裂解液配方可 以可最大限度的回收高纯度病毒核酸。 提取的病毒 RNA/DNA 纯度高,质量稳定可靠, 可适用于各种下游应用实验,如反转录和 RT-PCR。
注意事项
1. 所有的离心步骤均在室温完成,使用转速可以达到 13,000 rpm 的传统台式离心机。
2. 冰箱内保存的样品,使用前将样品平衡至室温。
操作步骤
提示:
第一次使用前请先在漂洗液 RW 瓶加入指定量无水乙醇 !
将样品平衡至室温。
1. 无细胞体液(例如:血浆 / 血清 / 淋巴液 / 无细胞体液 / 细胞培养上清液 / 尿液):
a. 200μL 血清等体液(需回复到室温,不足可用 0.9% NaCl 或者 PBS 补足)转入 1.5mL 离 心管,加入 400μL 裂解液 VLB, 立刻涡旋振荡 15 秒充分混匀。
b. 室温 (15-25℃ ) 放置 10 分钟。
c. 加入 450μL 无水乙醇,立刻涡旋振荡 15 秒充分混匀。
注意:如果周围环境高 30℃,乙醇需要再在冰上预冷后再加入。
d. 立刻接操作步骤的步骤 5。
2. 粪便样品:
a. 取 500μL 0.5-1 mL 粪便样本悬浮于 5 mL 生理盐水中,彻底涡旋振荡混匀后, 4,000×g (6,000 rpm) 离心 20 min 后取上清 200μL 转入 1.5mL 离心管,加入 400μL 裂解液 VLB,
立刻涡旋振荡 15 秒充分混匀。
b. 室温 (15-25℃ ) 放置 10 分钟。
c. 加入 450μL 无水乙醇,立刻涡旋振荡 15 秒充分混匀。
d. 立刻接操作步骤的步骤 5。
3. 鼻拭子 / 咽拭子:
a. 取样后与生理盐水或病毒运输液彻底颠倒或涡旋振荡混匀后取 200μL 转入 1.5mL 离心管, 加入 400μL 裂解液 VLB, 立刻涡旋振荡 15 秒充分混匀。
b. 室温 (15-25℃ ) 放置 10 分钟。
c. 加入 450μL 无水乙醇,立刻涡旋振荡 15 秒充分混匀。
d. 立刻接操作步骤的步骤 5。
4. 组织样本(气管、肺、喉头、脾脏、扁桃体、法氏囊、肾脏和淋巴结等):
a. 选取病变明显的组织块剪取样品约 20mg(备注:A. 可选择多部位剪碎混匀后 再取。B. 一 粒大米重约 20mg。C. 请勿使用过量组织,影响提取效果) ,依次加入 150μL 裂解液 VLB、 450μL 实验室纯水或者去离子水(不用灭菌)和 20μL 蛋白酶 K,用眼科剪反复多次剪碎混匀 或用电动匀浆器匀浆,置 56℃水浴中消化 15-30 分钟(视消化情况)后瞬时离心取上清。
b. 将上述处理后样本离心取上清 100μL 转入 1.5ml 离心管, 加入 300μL 裂解液 VLB, 立刻 涡旋振荡充分混匀。
c. 加入 250μL 无水乙醇,立刻涡旋振荡 15 秒充分混匀。
d. 立刻接操作步骤的步骤 5。
5. 将混合物 ( 每次小于 720μL,多可以分两次加入 ) 加入一个吸附柱 RA 中,(吸附柱放入收 集管中)12,000 rpm 离心 1 分钟,弃掉废液。
确保离心后液体全部滤过去,膜上没有残留,如有必要,可以加大离心力和离心时间。 6. 加 500μL 去蛋白液 RE,12,000rpm 离心 30 秒,弃废液。
7. 加入 500μL 漂洗液 RW(请先检查是否已加入无水乙醇 !), 12,000rpm 离心 30 秒, 弃废液, 加入 500μL 漂洗液 RW,重复一遍。
8. 将 RNase-free 吸附柱 RNANE 放回空收集管中, 12,000rpm 离心 2 分钟, 尽量除去漂洗液, 以免漂洗液中残留乙醇抑制下游反应。
9. 取出 RNase-free 吸附柱 RNANE, 放入一个 RNase free 的离心管中, 在吸附膜的中间部 位加 30-50μLRNase free H20, 室温放置 1 分钟,12,000rpm 离心 1 分钟。如果想得到较 多量的 DNA/RNA,可将得到的溶液重新加入离心吸附柱中,12,000rpm 离心 1 分钟。
洗脱体积越大,洗脱效率越高。如果需要 DNA/RNA 浓度较高,可以适当减少洗脱体积, 但是 最小体积不应少于 20μL,体积过小降低洗脱效率,减少 DNA/RNA 产量。
10. 病毒离心管中所得液体即为检测所需的样本 DNA 或 RNA。核酸提取完后请立即 实验。如需 短期保存,DNA 病毒核酸可以存放可以放置在 -20℃冰箱;RNA 病毒 核酸立刻短期放置在 -70℃ 超低温冰箱。
- mL