核小体76476

超微量高纯度质粒快速提取试剂盒(质粒小提)

超微量高纯度质粒快速提取试剂盒(质粒小提)
货号 次数
NP03012 100次
NP03013 200次

 

适用范围

适用于小量或微量质粒的快速提取。

 

 

试剂盒组成、储存、稳定性

试剂盒组成

保存

100 次(NP03012)

200 次(NP03013)

平衡液

室温

10 mL

20 mL

RNaseA10mg/mL

-20℃

250µL

500µL

溶液 P1

4℃

25 mL

50 mL

溶液 P2

室温

25 mL

50 mL

溶液 P3

室温

35 mL

70 mL

漂洗液 WB

室温

25 mL

第一次使用前加 100mL

无水乙醇

25 mL×2

第一次使用前加 100mL

无水乙醇 ×2

去蛋白液 PE

室温

31.5 mL

第一次使用前加 18mL

无水乙醇

63 mL

第一次使用前加 36mL

无水乙醇

洗脱缓冲液 EB

室温

15mL

15mL

吸附柱 NE/ 收集管(2mL)

室温

100 个

200 个

 

存储事项

本试剂盒在室温储存 24 个月不影响使用效果。

第一次使用时,将试剂盒所带的全部 RNaseA 加入溶液 P1 后(终浓度 100μg/mL)置  2-8℃保存。如果溶液 P1  RNase A 失活,提取的质粒可能会有微量 RNA 残留,在溶液P1 中补加 RNase A 即可。

环境温度低时溶液 P2  SDS 可能会析出浑浊或者沉淀,可在 37℃水浴加热几分钟,即可恢复澄 清,不要剧烈摇晃,以免形成过量的泡沫。

避免试剂长时间暴露于空气中产生挥发、氧化、pH 值变化,各溶液使用后应及时盖紧盖子。

 

产品介绍

本试剂盒采用改进 SDS- 碱裂解法裂解细胞,离心吸附柱内的硅基质膜在高盐、低 pH 值状态下选择性地结合溶液中的质粒 DNA, 再通过去蛋白液和漂洗液将杂质和其它细菌成分去除, 最后低盐、  pH 值的洗脱缓冲液将纯净质粒 DNA 从硅基质膜上洗脱。

 

产品特点

离心吸附柱内硅基质膜全部采用特制吸附膜,柱与柱之间吸附量差异极小,可重复性好。

独有的去蛋白液配方,可以高效去除残留的核酸酶,即使是核酸酶含量丰富的菌株如 JM 系列、 HB101 也可以轻松去除。有效防止了质粒被核酸酶降解。

快速、方便,不需要使用有毒的苯酚、氯仿等试剂,也不需要乙醇沉淀。获得的质粒产量高、 纯度好,  可以直接用于酶切、转化、PCR、体外转录、测序等各种分子生物学实验。

 

注意事项

所有的离心步骤均在室温完成,使用转速可以达到 13,000rpm 的传统台式离心机。

提取质粒的量与细菌培养浓度、质粒拷贝数等因素有关。一般高拷贝质粒,建议接种单菌落于1.5-4.5 mL 加合适抗生素的 LB 培养基,   过夜培养 14-16 个小时,可提取出多达 20µg 的纯   净质粒。如果所提质粒为低拷贝质粒或大于 10kb 的大质粒,应适当加大菌体使用量,使用 5-10 mL 过夜培养物,同时按比例增加 P1、P2、P3 的用量,其它步骤相同。

 得到的质粒 DNA 可用琼脂糖凝胶电泳和紫外分光光度计检测浓度与纯度。OD260 值为 1 相当于  50µg/ml DNA。电泳可能为单一条带,也可能为 2 条或者多条 DNA 条带,这主要是不同程度的 超螺旋构象质粒泳动位置不一造成, 与提取物培养时间长短、提取时操作剧烈程度等有关。本公司 产品正常操作情况下基本超螺旋可以超过 90%。

质粒 DNA 确切分子大小,   必须酶切线性化后,   对比 DNA 分子量 Marker 才可以知道。处于环状 或者超螺旋状态的的质粒,泳动位置不确定,无法通过电泳知道其确切大小。

洗脱液 EB 不含有螯合剂 EDTA,不影响下游酶切、连接等反应。也可以使用水洗脱,但应该确   保 pH 大于 7.5,pH 过低影响洗脱效率。用水洗脱质粒应该-  20℃保存。质粒 DNA 如果需要长 期保存,可以用 TE 缓冲液洗脱(10mM Tris-HCl,1mM EDTA,pH 8.0),但是 EDTA 可能 影响下游酶切反应,使用时可以适当稀释。

关于平衡液的使用

介绍: 核酸吸附硅胶膜柱子长期放置过程中会同空气中的电荷 / 尘埃发生反应而影响其核酸的结合能力。 硅胶柱经平衡液预处理后可大大减少柱子中硅胶膜的憎水基团,提高核酸的结合能力,从而提高硅胶柱   子回收效率。平衡液是强碱性溶液,若不小心碰到,请用大量自来水清洗。用完后需盖紧瓶盖,以免接  触空气。平衡液室温保存,在保存过程中如有沉淀生成,请加热至 37℃使沉淀完全消失。

使用方法 :取一个新的硅胶膜吸附柱子装在收集管中,吸取 100µL 的平衡液至柱子中。13,000rpm 离心 1 分钟,倒掉收集管中废液,将吸附柱子重新放回收集管。此时平衡液预处理柱子完毕。接后续的 操作步骤。

操作步骤(实验前请先阅读注意事项)

提示:

第一次使用前请先在漂洗液 WB 和去蛋白液 PE 瓶中加入指定量无水乙醇,充分混匀,加入后请及时在方框打钩标记已加入乙醇,以免多次加入 !

*将 RNase A 全部加入溶液 P1 中,混匀,每次使用后置于 2-8℃保存。

1. 吸附柱预处理:取一个新的硅胶膜吸附柱子装在收集管中,吸取 100µL 的平衡液至柱子中。   13,000 rpm 离心 1 分钟, 倒掉收集管中废液, 将吸附柱子重新放回收集管。此时平衡液预处理柱子完毕。

2. 取 1.5-4.5 mL 过夜培养的菌液,12,000 rpm 离心 30 秒,尽可能的倒干上清,收集菌体。

收集超过 1.5 mL 菌液, 可以离心弃上清后, 在同一个 1.5mL 管内加入更多的菌液, 重复步骤 1, 直到收集到足够的菌体。

3. 用 250µL 溶液 P1 重悬菌体沉淀,涡旋振荡至彻底悬浮。

如果有未彻底混匀的菌块,会影响裂解,导致提取量和纯度偏低。

4. 加 250µL 的溶液 P2,温和地上下翻转 6-8 次使菌体充分裂解,室温放置 4 分钟。

温和地混合,不要剧烈震荡,以免基因组 DNA 剪切断裂!所用时间不应超过 5 分钟!以免质粒 受到破坏。此时菌液应变得清亮粘稠,如果菌体少,很快清亮粘稠后就可以做下一步。

5. 加 350µL 溶液 P3, 立即温和地上下翻转 6-8 次, 充分混匀时会出现白色絮状沉淀。13,000rpm 离心 10 分钟,小心取上清。

加入溶液 P3 后应该立即混匀,以免产生 SDS 的局部沉淀。

6. 将上一步所得上清加入吸附柱 NE (吸附柱放入收集管中  12,000rpm 离心 30-60 秒, 倒掉收集管中的废液。

7. 可选步骤 : 加入 500µL 去蛋白液 PE12,000rpm 离心 30 秒,弃废液。

此步骤为了去除痕量核酸酶等杂质,如所用菌株为 JM 系列、HB101  endA 菌株或野生型菌   株,核酸酶含量丰富, 应加此步骤;如所用菌株为 XL-1 Blue、Top10 和 DH5α 等缺陷型菌株, 核酸酶含量低,则可略过此步骤。

8. 加入 600µL 漂洗液 WB(请先检查是否已加入无水乙醇 ! 12,000rpm 离心 30 秒, 弃掉废液。

9. 加入 600µL 漂洗液 WB12,000rpm 离心 30 秒,弃掉废液。

10. 将吸附柱 NE 放回空收集管中, 13,000rpm 离心 2 分钟,尽量除去漂洗液, 以免漂洗液中残留乙

醇抑制下游反应。

11. 取出吸附柱 NE,放入一个干净的离心管中,  在吸附膜的中间部位 50-100µL 洗脱缓冲液 EB(洗脱缓冲液事先在 65-70℃水浴中加热效果更好),室温放置 2 分钟,12,000rpm 离心 1   分钟。如果需要较多量质粒,可将得到的溶液重新加入离心吸附柱中,离心 1 分钟。

 

洗脱体积越大,洗脱效率越高。如果需要质粒浓度较高,可以适当减少洗脱体积,   但是最小 体积不应少于 30μL,体积过小降低质粒洗脱效率,减少质粒产量。

 

说明书:



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