多片段无缝克隆试剂盒
货号 | 次数 |
NC02010 | 20次 |
适用范围
适用于快速提取植物组织、细胞、真菌基因组 DNA。
试剂盒组成、储存、稳定性
试剂名称 |
20 次 |
2 × Cloning Master Mix |
100 μL |
-20℃保存, 避免反复冻融。
产品介绍
本制品不依赖于 T4 连接酶,不受载体和目的片段的酶切位点限制,而直接用重叠片段重组 的方法,采用特殊的酶组合可以将任意方法线性化后的载体和与其两端具有 15-25bp 重叠区域 的 PCR 片段(平端)定向重组,可以快速实现 1-5 个片段的高效无缝克隆。
产品特点
·15 分钟可以将一个或者多个长、短 PCR 扩增片段(平端)插入载体。
·不受载体和插入片段酶切位点的可用性和载体平端 / 粘性末端的限制, 可以在任意位点进行克隆。 ·无缝克隆,插入点不会引入不需要的碱基序列。
·高效、准确,阳性率> 95% 。
操作步骤
注意:2×OneStep Cloning Mix 含有连接增强剂 PEG 很粘稠, 从冰箱拿出来温度低时 更粘稠,可以放在手心化冻几分钟提高温度便可降低粘稠度(不影响质量) ,手指拨打离心管底 充分混匀或者涡旋震荡充分混匀。
按照下表建立反应体系(可使用 PCR 管在室温配制)
2 × Cloning Master Mix |
5 μL |
Linear Vector (10-80 ng) |
X μL* |
Insert(s) |
Y μL* |
dd H2O |
To 10 μL |
* 载体一般用 20-50 ng,插入片段与载体的摩尔比在 2:1-3:1 之间最佳;如果插入片段小 于 200bp,插入片段与载体的摩尔比用 5:1 多片段连接情况下,片段与片段之间摩尔比为 1:1 。
轻轻吹打混匀,在 50℃反应 15 分钟(可在 PCR 仪器上进行) ,反应结束后,将 PCR 管 置冰上后直接转化或者保存于 -20℃。较短片段例如 100bp-1kb 只需要 15 分钟便能获得足够 转化子,较长片段的连接,可以延长反应时间到 60 分钟。
取 5 μL 反应产物按照感受态细胞说明书进行转化(如果转化子较少,可以将所有的产物转 化并将所有的转化液涂板)。
阳性克隆的鉴定
可根据具体情况,选择菌落 PCR 鉴定,提取质粒(货号 NP03013)进行限制性内切酶鉴 定或测序鉴定。
计算扩增引物退火温度时,只需计算基因特异性扩增序列的 Tm 值,载体末端同源序列不应 参与计算。
正向引物设计举例说明(EcoR I 酶切开)
根据上述设计原则,从 3’端开始计算,往回算 16bp-25bp(本举例采用了 20 bp 末端重 叠相同序列) ,加到目的片段特异引物序列前面即可。确保重叠区域的 Tm 值保持一致且﹥60℃ (AT pair = 2℃ and GC pair = 4℃ )。
正向引物具体如下:5' — GAGCCTAGGTGAGTTGGCCGNNNNNNNNNNNNNNNNNNNN —3' 注意:以上引物设计完成克隆连接后,EcoR I 酶切位点将会消失(不保留酶切位点)。
如果需要保留 EcoR I 酶切位点,需要在载体末端 20 bp 重叠序列和目的片段特异引物序列 之间补齐缺失的 EcoR I 识别位点序列 aattc,完成克隆连接后, EcoR I 酶切位点依然存在(保 留酶切位点)。
具体如下:5' — GAGCCTAGGTGAGTTGGCCGaattc NNNNNNNNNNNNNNNNNNNN —3'
反向引物设计举例说明(Hind III 酶切开)
如上图,载体由 Hind III 酶切开,形成 5’突出末端:
根据上述设计原则,从 3’端开始计算,往回算 16bp-25bp(本举例采用了 20 bp 末端重 叠相同序列),加到目的片段特异引物序列前面即可。确保重叠区域的 Tm 值保持一致且﹥60℃ (AT pair = 2℃ and GC pair = 4℃ )。
反向引物具体如下: 5' — CTGCCATCGGATCGTTCGCANNNNNNNNNNNNNNNNNNNN —3' 注意:以上引物设计完成克隆连接后,Hind III 切位点将会消失(不保留酶切位点)。
如果需要保留 Hind III 酶切位点,需要在载体末端 20 bp 重叠序列和目的片段特异引物序列 之间补齐缺失的 Hind III 识别位点序列 agctt ,Hind III 酶切位点依然存在(保留酶切位点)。
具体如下: 5' — CTGCCATCGGATCGTTCGCAagctt NNNNNNNNNNNNNNNNNNNN —3'
线性化载体和插入 DNA 片段的制备
A: 线性化载体的制备
酶切来源: 酶切所得线性载体,平末端或者粘端、单酶切或者双酶切均可,酶切后胶回收。
注:一步法无缝克隆反应体系内无双链 DNA 连接酶,不会发生载体自连反应。因此,即使 是以单酶切方式制备的线性化载体也无需进行末端脱磷酸处理。重组产物转化后出现的假阳性克 隆 ( 无插入片段 ) 是由酶切不完全未线性化环状载体转化而形成的。我们推荐酶切后胶回收可以 把这种未线性化载体比例降低到最低程度。
反向 PCR 来源: 建议使用高保真 DNA 聚合酶制备,如果扩增条带单一可以通过 PCR 产 物纯化获得载体,否则通过胶回收获得载体。
注:反向 PCR 的质粒模板也是非线性化载体,也可能导致假阳性克隆(无插入片段) ,因 此 PCR 来源线性载体(PCR 产物)纯化前用 Dpn I 内切酶消化质粒模板,可以降低背景,提高 阳性率。但是一般情况下,经过胶回收已经足以把这种未线性化载体比例降低到最低,因此反向 PCR 来源的线性化载体我们也推荐胶回收。
B: 插入 DNA 片段的制备
单个插入片段克隆引物设计: 克隆引物包括插入片段特异性引物序列和重叠序列。
克隆正向引物 (5’-3’):线性载体正向 16-25 nt 重叠区序列 (3’末端算起 )+ 插入片段正 向特异引物序列(18-25 nt)。
克隆反向引物 (5’-3’):线性载体反向 16-25 nt 重叠区序列 (3’末端算起 )+ 插入片段反 向特异引物序列(18-25 nt)。
注意: 重叠区的碱基数至少 16 bp,并且多段重叠区域之间的 Tm 值需保持一致且﹥60℃ (AT pair = 2℃ and GC pair = 4℃ ),否则可延长碱基数目直到符合要求。
按照线性载体末端的结构(5’突出,3’突出,平末端),引物设计也分 3 种情况,示意如下:线性化载体的两端因线性方式(如单酶切、双酶切、反向 PCR)不同,可以是以上三种末 端结构的两两任意组合,插入片段特异性引物设计的原则遵循一般引物设计的原则即可。
多个插入片段的克隆引物设计:与载体两端连接的插入片段引物设计方法同单片段设计方法, 片段与片段之间连接的插入片段引物设计方法见下图例:
* 多个插入片段之间重叠区设计有上述 * 标记 ( 蓝色和红色)的两种方式,在多片段引物设 计时,选择任意一种方式或者两种方式混用均可,保证片段与片段之间有 15-25bp 的重叠区。
酶的选择: 建议使用高保真 DNA 聚合酶或者 PCR Mix。
反应条件: 一般按照具体使用的聚合酶说明书进行即可。
纯化插入片段
·可选:如果片段来源于质粒模板,且该质粒与重组载体具有相同抗性,纯化前用 Dpn I 内 切酶消化质粒模板, 可降低背景,提高阳性率。
·如果片段单一 ,则建议用 PCR 产物纯化试剂盒纯化片段。
·如果有非特异扩增,则建议用胶回收 ( 货号:NP01013) 试剂盒回收片段。
·使用该方法克隆,用来线性化载体的酶切位点在拼接的时候会缺失,如果对酶切位点有严 格要求的,建议 注意酶切位点的选择,必要时可在正反向克隆引物的重叠区序列和特异基因序列 之间增加缺失掉的碱基来恢复原有酶切位点(见前述正反向引物设计举例说明)。
·如果重组质粒用于蛋白表达,则在引物设计时注意读码框,蛋白表达及纯化所需序列(如 启动子,RBS 序列,起始密码子,终止密码子,蛋白标签等)不被破坏。
- 水试剂